Влияние фотоактивированного копропорфирина на микроциркуляцию
https://doi.org/10.24884/1682-6655-2018-17-4-75-80
Аннотация
Цель исследования – изучить влияние фотоактивированного копропорфирина III (КП III) на микроциркуляцию в брыжейке тонкой кишки крыс.
Материал и методы. Исследование проводили на 20 крысах-самцах, которых разделили на 4 группы: контроль; влияние КП III; влияние лазерного облучения; влияние лазерного облучения на фоне предварительного введения КП III. Объектом исследования были венулы (20–40 мкм) брыжейки тонкой кишки крыс. Исследование скорости кровотока в венулах проводили с использованием метода прижизненной биомикроскопии. Регистрация скоростных параметров микроциркуляции осуществлялась с помощью быстродействующей видеокамеры Basler acA2000 (Германия). Копропорфирин III («Элест», Россия) в дозе 10 мг/кг вводили в хвостовую вену за 3 ч до облучения. Облучение проводили с помощью полупроводникового лазерного аппарата «Лахта Милон» («Квалитек», Россия) (λ=635 нм; 0,1 Вт/см2 ; 300 с; 30 Дж/см2 ).
Результаты. Введение КП III без последующего облучения не повлияло на изменение скорости кровотока в течение всего периода наблюдения. Лазерное облучение венул без предварительного введения КП III приводило к увеличению скорости кровотока на 39,1 % (р<0,05). После лазерного облучения венул в той же дозе на фоне предварительного введения КП III наблюдалось постепенное уменьшение скорости кровотока уже после прекращения процесса фотоактивации.
Выводы. Изучено влияние фотоактивированного КП III на микроциркуляцию в брыжейке тонкой кишки крыс. Изменения кровотока в венулах в брыжейке крыс под воздействием КП III при используемых параметрах лазерного облучения развиваются, главным образом, в пострадиационном периоде и, по-видимому, связаны с дисфункцией эндотелия.
Ключевые слова
микроциркуляция,
фотосенсибилизатор,
копропорфирин,
фотодинамическая терапия,
скорость кровотока,
крысы
Об авторе
Т. Г. Гришачёва
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия
197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8
Россия
197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8
Список литературы
1. Chuannong Zhou. Mechanisms of tumor destruction caused by photodynamic therapy. Proc. SPIE 5967, 2004 Shanghai International Conference on Laser Medicine and Surgery, 596706 (11 September 2006). Doi: 10.1117/12.639100.
2. Wang W, Moriyama LT, Bagnato VS. Photodynamic therapy induced vascular damage: an overview of experimental PDT. Laser Physics Letters. 2012;10(2):023001. Doi: 10.1088/1612-2011/10/2/023001.
3. Richard L Lipson, Edward J Baldes, Arthur M Olsen. The Use of a Derivative of Hematoporphyrin in Tumor Detection. JNCI: Journal of the National Cancer Institute. 1961:26 (Is. 1):1–11. Available at: https://doi.org/10.1093/jnci/26.1.1 (accessed 18.12.2018).
4. Dougherty TJ, Kaufman JE, Goldfarb A et al. Photoradiation therapy for the treatment of malignant tumors. Cancer Res. 1978;38:2628–2635.
5. Dougherty TJ. Hematoporphyrin derivative for detection and treatment of cancer. J. Surg. Oncol. 1980;15:209–210. Doi:10.1002/jso.2930150303.
6. Eugeny Ph Stranadko, Eugeny Ph Stranadko, Oleg K Skobelkin et al. Photodynamic therapy of cancer: five-year clinical experience”, Proc. SPIE 3191, Photochemotherapy: Photodynamic Therapy and Other Modalities III. 1997;29 Dec. Doi: 10.1117/12.297812.
7. Castano AP, Demidova TN, Hamblin MR. Mechanisms in photodynamic therapy: part one – photosensitizers, photochemistry and cellular localization. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2004;1(4):279–293. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/s1572-1000(05)00007-4 (accessed 18.12.2018).
8. Beckmann S, Wessel T, Franck B et al. Coproporphyrin II for Photodynamic Therapy. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 1990;29:1395–1397. Doi:10.1002/anie.199013951.
9. Yamamoto M, Nagano T, Okura I et al. Production of singlet oxygen on irradiation of a photodynamic therapy agent, zinc-coproporphyrin III, with low host toxicity. Biometals. 2003;16:591–597.
10. Малков М. А., Петрищев Н. Н., Мишуткин С. Н. Разработка способа фотодинамической терапии для лечения неопластических новообразований с использованием фотосенсибилизатора на основе препарата копропорфирин // Фундамент. исслед. – 2008. – № 1. – С. 142– 146.
11. Ozawa H, Asahina T, Murakami H et al. Zinc Coproporphyrin I Derived from Meconium Has an Antitumor Effect Associated with Singlet Oxygen Generation. Fetal Diagn Ther. 2013;33:90–97. Doi: 10.1159/000342419.
12. Toriya M, Yamamoto M, Saeki K et al. Antitumor effect of photodynamic therapy with zincphyrin, zinc-coproporphyrin III, in mice. Biosci Biotechnol Biochem. 2001;65(2):363–370. Doi: 10.1271/bbb.65.363.
13. Saito A, Nagao T, Minamitani H et al. Vascular shut down effect on the microcirculation in photodynamic therapy using zinc coproporphyrin. Proceedings of the 19th Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society. ‘Magnificent Milestones and Emerging Opportunities in Medical Engineering’ (Cat. No. 97CH36136), Chicago, IL, USA, 1997;5:2294–2295. Doi: 10.1109/IEMBS.1997.758821.
14. Strauss WSL, Sailer R, Schneckenburger Het al. Photodynamic efficacy of naturally occurring porphyrins in endothelial cells in vitro and microvasculature in vivo. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. Elsevier BV; 1997;39(2):176–84. Available at: http://dx.doi.org/10.1016/ s1011-1344(97)00002-x (accessed 18.12.2018).
15. Малков М. А., Мишуткин С. Н., Момот Н. Н. Способ выделения и очистки копропорфирина III: патент на изобретение RUS 2334511. 17.11.2006. 2008.
16. Belousova IM, Dobrun MV, Galebskaya LV et al. New preparation based on coproporphyrin III for photoluminescence diagnostics and photodynamic therapy / Rosanov NN, Venediktov VY, editors. Laser Optics 2010;16 Jul 16. Available at: http://dx.doi.org/10.1117/12.896108 (accessed 18.12.2018).
17. Белозерцева И. В., Драволина О. А., Тур М. А. Руководство по использованию лабораторных животных для научных и учебных целей в ПСПбГМУ им. акад. И. П. Павлова / под ред. Э Э. Звартау. – СПб.: ПСПбГМУ, 2014. – 80 с.
18. Михайлова И. А. Связь параметров процесса тромбообразования и скорости кровотока в микрососудах брыжейки крысы // Росс. физиолог. журн. им. И. М. Сеченова. – 1991. – Т. 77, № 6. – С. 95–99.
19. Барабанщикова Г. В., Кузьмин Д. Н., Кувалдин Э. В. и др. Влияние лазериндуцированной фотохимической реакции копропорфирина III на функциональные свойства сосудов микроциркуляторного русла // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. – 2004. – Т. 3, № 3 (13). – С. 64–67.
20. Markwardt NA, Haj-Hosseini N, Hollnburger B et al. 405 nm versus 633 nm for protoporphyrin IX excitation in fluorescence-guided stereotactic biopsy of brain tumors. J. Biophotonics. 2015;9:901–912.
21. Петрищев Н. Н., Гришачева Т. Г., Михайлова И. А. и др. О возможном влиянии температурных эффектов на светочувствительность микрососудов в присутствии фотосенсибилизаторов // Лазер. мед. – 2015. – Т. 19, № 1. – С. 29–32.
Рецензия
Для цитирования:
Гришачёва Т.Г. Влияние фотоактивированного копропорфирина на микроциркуляцию. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2018;17(4):75-80. https://doi.org/10.24884/1682-6655-2018-17-4-75-80
For citation:
Grishacheva T.G. Influence of photoactivated coproporphirin on microcirculation. Regional blood circulation and microcirculation. 2018;17(4):75-80. (In Russ.) https://doi.org/10.24884/1682-6655-2018-17-4-75-80
Просмотров:
965
Послать статью по эл. почте 
