Preview

Регионарное кровообращение и микроциркуляция

Расширенный поиск

Эндотелиальный гликокаликс: методы исследования и перспективы их применения при оценке дисфункции эндотелия

https://doi.org/10.24884/1682-6655-2020-19-1-5-16

Полный текст:

Аннотация

Современный взгляд на эндотелиальную дисфункцию в патогенезе многих заболеваний включает, наряду с нарушением морфологии и функции клеток эндотелия, и повреждение гликокаликса – гелеобразного надмембранного комплекса из белково-углеводных, углеводно-липидных компонентов и плазменных молекул, образующих трехмерную сетчатую структуру на люминальной поверхности эндотелия. Особенности пограничного расположения эндотелиального гликокаликса в сосудистом русле обуславливают ряд важных функций – барьерную, регуляторную, противовоспалительную, антитромботическую, механотрансдукции и др. В последние годы, благодаря совершенствованию методов визуализации эндотелиального гликокаликса, детализирована его структура, уточнены физиологические функции, а также роль в развитии ряда патологических состояний. Современные способы оценки гликокаликса включают в себя инвазивные и неинвазивные методы исследования, наиболее перспективными среди которых являются темнопольная микроскопия и определение гликокаликс-ассоциированных биохимических маркеров. Повреждение эндотелиального гликокаликса является универсальным звеном патогенеза и наиболее ранним маркером развития большинства заболеваний, поэтому его оценка относится к перспективным направлениям исследований. Способность коррелировать с другими прогностическими показателями позволяет рассматривать повреждение эндотелиального гликокаликса как маркер неблагоприятного течения болезни, что в будущем позволит персонифицировать лечение, предотвратив прогрессирование заболеваний у таких пациентов.

Об авторах

Т. Д. Власов
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Власов Тимур Дмитриевич – д-р мед. наук, профессор, зав. кафедрой патофизиологии с курсом клинической патофизиологии

197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8



О. А. Лазовская
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Лазовская Ольга Александровна – ассистент кафедры общей врачебной практики (семейной медицины)

197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8



Д. А. Шиманьски
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Шиманьски Даниэль Анджеевич – аспирант кафедры терапии госпитальной с курсом аллергологии и иммунологии им. акад. М. В. Черноруцкого с клиникой

197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8



И. И. Нестерович
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Нестерович Ирина Ивановна – д-р мед. наук, профессор кафедры терапии госпитальной с курсом аллергологии и иммунологии им. акад. М. В. Черноруцкого с клиникой

197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8



Н. Л. Шапорова
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И. П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Шапорова Наталия Леонидовна – д-р мед. наук, профессор, зав. кафедрой общей врачебной практики (семейной медицины)

197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8



Список литературы

1. Васина Л. В., Петрищев Н. Н., Власов Т. Д. Э телиальная дисфункция и ее основные маркеры // Регионар. кровообращение и микроциркуляция. – 2017. – Т. 16, № 1. – С. 4–15. Doi: 10.24884/1682-6655-2017-16-1-4-15.

2. Власов Т. Д., Нестерович И. И., Шиманьски Д. А. Эндотелиальная дисфункция: от частного к общему. Возврат к «старой парадигме»? // Регионар. кровообращение и микроциркуляция. – 2019. – Т. 18, № 2. – С. 19–27. Doi: 10.24884/1682-6655-2019-18-2-19-27.

3. Reitsma S et al. The endothelial glycocalyx: Composition, functions, and visualization. Pflugers Arch. Eur. J. Physiol. 2007;454(3):345–359. Doi: 10.1007/s00424-007-0212-8.

4. Cao R-N et al. Endothelial glycocalyx as a potential theriapeutic target in organ injuries. Chin. Med. J. (Engl). Ovid Technologies (Wolters Kluwer Health). 2019;132(8):963–975. Doi: 10.1097/CM9.0000000000000177.

5. Cabrales P et al. Microvascular and capillary pe following glycocalyx degradation. J. Appl. Physiol. 2007;102(6): 2251–2259. Doi: 10.1152/japplphysiol.01155.2006.

6. Турашев А. Д., Максименко А. В. Эндотелиальный гликокаликс в функционировании микроциркуляторного русла // Кардиол. вестн. – 2009. – № 2. – С. 59–65.

7. Zeng Y. Endothelial glycocalyx as a critical signalling platform integrating the extracellular haemodynamic forces and chemical signalling. J. Cell. Mol. Med. 2017;21(8):14571462. Doi: 10.1111/jcmm.13081.

8. Максименко А. В., Турашев А. Д. Эндотелиальный гликокаликс системы кровообращения. I. Обнаружение, компоненты, структурная организация // Биоорган. химия. – 2014. – Т. 40, № 2. – С. 131–141. Doi: 10.1134/s1068162014020113.

9. Cancel LM, Tarbell JMC. The glycocalyx and its s ficance in human medicine. J. Intern. Med. 2016;280:97–113. Doi: 10.1111/joim.12465.

10. Gao L, Lipowsky HH. Composition of the endothelial glycocalyx and its relation to its Thickness and diffusion of small solutes. Microvasc.Res. 2010;80(3):394–401. Doi: 10.1016/j.mvr.2010.06.005.

11. Tkachenko E, Rhodes JM, Simons M. Syndecans: New kids on the signaling block. Circ. Res. 2005;96(5):488–500. Doi: 10.1161/01.RES.0000159708.71142.c8.

12. Rahbar E et al. Endothelial glycocalyx shedding and vascular permeability in severely injured trauma patients. J. Transl. Med. 2015;13(1):1–7. Doi: 10.1186/s12967-015-0481-5.

13. Ostrowski SR et al. Sympathoadrenal activation and endothelial damage in patients with varying degrees of acute infectious disease: An observational study. J. Crit. Care. Elsevier Inc. 2015;30(1):90–96. Doi: 10.1016/j.jcrc.2014.10.006

14. Ma P et al. Heparanase deglycanation of syndecan-1 is required for binding of the epithelial-restricted prosecretory mitogen lacritin. J. Cell Biol. 2006;174(7):1097–1106. Doi: 10.1083/jcb.200511134.

15. Ebong EE et al. Shear-induced endothelial NOS activation and remodeling via heparan sulfate, glypican-1, and syndecan-1. Integr. Biol. (United Kingdom). 2014;6(3):338–347. Doi: 10.1039/c3ib40199e.

16. Zeng Y, Liu J. Role of glypican-1 in endothelial NOS activation under various steady shear stress magnitudes. Exp. Cell Res. Elsevier. 2016;348(2):184–189. Doi: 10.1016/j.yexcr.2016.09.017.

17. Zhang L. Glycosaminoglycan (GAG) biosynthesis and GAG-binding proteins. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 1st ed. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 2010;93:1–17. Doi: 10.1016/S1877-1173(10)93001-9.

18. Fraser JRE, Laurent TC, Laurent UB. Hyaluronan: its nature, distribution, functions and turnover. J. Intern. Med. 1997;242:27–33. Doi: 10.1046/j.1365-2796.1997.00170.x.

19. Lennon FE, Singleton PA. Hyaluronan regulation of vascular integrity. Am. J. Cardiovasc. Dis. 2011;1(3): 200–213.

20. Yilmaz O et al. The role of endothelial glycocalyx in health and disease. Clin. Kidney J. 2019;12(5):611–619. Doi: 10.1093/Ckj/sfz042.

21. Weinbaum S, Tarbell JM, Damiano ER. The Structure and Function of the Endothelial Glycocalyx Layer. Annu. Rev. Biomed. Eng. 2007;9(1):121–167. Doi: 10.1146/annurev.bioeng.9.060906.151959.

22. Betteridge KB et al. Sialic acids regulate microvessel permeability, revealed by novel in vivo studies of endothelial glycocalyx structure and function. J. Physiol. 2017;595(15): 5015–5035. Doi: 10.1113/JP274167.

23. Сокологорский С. В., Овечкин А. М. Принцип С линга, гликокаликс и эндотелиальный поверхностный слой. Как совместить? // Анестезиология и реаниматология. 2018. – Т. 6. – С. 5–14. Doi: 10.17116/anesthesiology20180615.

24. Di Lorenzo A et al. eNOS-derived nitric oxide regulates endothelial barrier function through VE-cadherin and Rho GTPases. J. Cell Sci. 2014;127(9):2120–2120. Doi: 10.1242/jcs.115972.

25. Xu S, Ha CH, Wang W, Xu X, Yin M, Jin FQ, M gelo M, Koroleva M, Fujiwara K, Jin ZG. PECAM1 regulates flow-mediated Gab1 tyrosine phosphorylation and signaling. Cell Signal. 2016;28(3):117–124. Doi: 10.1016/j.cellsig.2015.12.007.

26. Yen W et al. Endothelial surface glycocalyx can regulate flow-induced nitric oxide production in microvessels in vivo. PLoS One. 2015;10(1):1–20. Doi: 10.1371/journal.pone.0117133.

27. Chappell D et al. TNF-α induced shedding of the endothelial glycocalyx is prevented by hydrocortisone and antithrombin. Basic Res. Cardiol. 2009;104(1):78–89. Doi: 10.1007/s00395-008-0749-5.

28. Hofmann-Kiefer KF et al. Serum heparan sulfate levels are elevated in endotoxemia. Eur. J. Med. Res. 2009; 14(12):526–531. Doi: 10.1186/2047-783x-14-12-526.

29. Ihrcke NS, Platt JL. Shedding of heparan sulfate proteoglycan by stimulated endothelial cells: Evidence for proteolysis of cell-surface molecules. Journal of Cellular Physiology. 1996;168(3):625–637. Doi: 10.1002/(SICI)10974652(199609)168:3<625::AID-JCP15>3.0.CO;2-Y.

30. Platt JL et al. The role of C5a and antibody in the release of heparan sulfate from endothelial cells. Eur. J. Immunol. 1991;21(11):2887–2890. Doi: 10.1002/eji.1830211135.

31. Brule S, Charnaux N, Sutton A, Ledoux D, Chaigneau T, Saffar L, Gattegno L. The shedding of syndecan-4 and syndecan-1 from HeLa cells and human primary macrophages is accelerated by SDF-1/CXCL12 and mediated by the matrix metalloproteinase-9. Glycobiology. 2006;16(6):488–501. Doi: 10.1093/glycob/cwj098.

32. Endo K et al. Cleavage of Syndecan-1 by Membrane Type Matrix Metalloproteinase-1 Stimulates Cell Migration. J. Biol. Chem. 2003;278(42):40764–40770. Doi: 10.1074/jbc.M306736200.

33. Lipowsky HH. The Endothelial Glycocalyx as a Barrier to Leukocyte Adhesion and its Mediation by Extracellular Proteases. Annu. Rev. Biomed. Eng. 2012;40(4):840–848. Doi: 10.1007/s10439-011-0427-x.

34. Mulivor AW, Lipowsky HH. Inflammation- and ischemia-induced shedding of venular glycocalyx. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2004;286(5):55–5. Doi: 10.1152/ajpheart.00832.2003.

35. Максименко А. В., Турашев А. Д. Функции и с яние эндотелиального гликокаликса в норме и патологии // Атеросклероз и дислипидемии. – 2011. – № 2. – С. 28–40.

36. Wilsie LC, Orlando RA. The low density lipoprotein receptor-related protein complexes with cell surface heparan sulfate proteoglycans to regulate proteoglycan-mediated lipoprotein catabolism. J. Biol. Chem. 2003;278(18):1575815764. Doi: 10.1074/jbc.M208786200.

37. Faraci FM, Didion SP. Vascular protection: Superoxide dismutase isoforms in the vessel wall. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2004;24(8):1367–1373. Doi: 10.1161/01.ATV.0000133604.20182.cf.

38. Vink H, Constantinescu AA, Spaan JA. Oxidized L proteins Degrade the Endothelial Surface Layer. Implications for Platelet-Endothelial Cell Adhesion. Circulation. 2000; 101:1500–1502. Doi: 10.1161/01.cir.101.13.1500.

39. Robinson CJ, Stringer SE. The splice variants of vascular endothelial growth factor (VEGF) and their receptors. J. Cell Sci. 2001;114(5):853–865.

40. Lekakis J et al. Methods for evaluating endothelial function: A position statement from the European Society of Cardiology Working Group on Peripheral Circulation. European Journal of Cardiovascular Prevention and Rehabilitation. 2011;18(6):775–789. Doi: 10.1177/1741826711398179.

41. Michel CC, Curry FRE. Glycocalyx volume: A critical review of tracer dilution methods for its measurement. Microcirculation. 2009;16(3):213–219. Doi: 10.1080/10739680802527404.

42. Nieuwdorp M et al. Measuring endothelial glycocalyx dimensions in humans: A potential novel tool to monitor vascular vulnerability. J. Appl. Physiol. 2008;104(3):845–852. Doi: 10.1152/japplphysiol.00440.2007.

43. Dogné S et al. Hyaluronidase 1 deficiency preserves endothelial function and glycocalyx integrity in early streptozotocin-induced diabetes. Diabetes. 2016;65(9):2742–2753. Doi: 10.2337/db15-1662.

44. Nieuwdorp M et al. Loss of endothelial glycocalyx during acute hyperglycemia coincides with endothelial dysfunction and coagulation activation in vivo. Diabetes. 2006;55(2):480–486. Doi: 10.2337/diabetes.55.02.06.db05-1103.

45. Vink H, Duling BR. Capillary endothelial surface layer selectively reduces plasma solute distribution volume. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000;278(1):47–51. Doi: 10.1152/ajpheart.2000.278.1.H285.

46. Nieuwdorp M et al. Endothelial glycocalyx damage coincides with microalbuminuria in type 1 diabetes. Diabetes. 2006;55(4):1127–1132. Doi: 10.2337/diabetes.55.04.06.db05-1619.

47. Meuwese MC et al. Partial recovery of the endothelial glycocalyx upon rosuvastatin therapy in patients with heterozygous familial hypercholesterolemia. J. Lipid Res. 2009;50(1):148–153. Doi: 10.1194/jlr.P800025-JLR200.

48. Hubert Louis Haeren R et al. Assessment and Imaging of the Cerebrovascular Glycocalyx. Curr. Neurovasc. Res. 2016;13(3):249–260. Doi: 10.2174/1567202613666160504104434.

49. Holzmann MS et al. Syndecan-1 as a biomarker for sepsis survival after major abdominal surgery. Biomark. Med. 2018;12(2):119–127. Doi: 10.2217/bmm-2017-0231.

50. Ushiyama A, Kataoka H, Iijima T. Glycocalyx and its involvement in clinical pathophysiologies. Journal of Intensive Care. 2016;4(1). Doi: 10.1186/s40560-016-0182-z.

51. Iba T, Levy JH. Derangement of the endothelial glycocalyx in sepsis. J. Thromb. Haemost. 2019;17(2):283–294. Doi: 10.1111/jth.14371.

52. Kim YH et al. Endothelial Glycocalyx as Biomarker for Cardiovascular Diseases: Mechanistic and Clinical Implications. Current Heart Failure Reports. 2017;14(2):117–126. Doi: 10.1007/s11897-017-0320-5.

53. Нестерович И. И., Ночевная К. В., Рабик Ю. Д. и др. Роль сосудистых нарушений в поражении легких у больных ревматоидным артритом // Регионар. кровообращение и микроциркуляция. – 2016. – Т. 15, № 3. – С. 15–23. Doi: 10.24884/1682-6655-2016-15-3-15-23.

54. Saboia ZMRM et al. Association between syndecan-1 and renal function in adolescents with excess weight: Evidence of subclinical kidney disease and endothelial dysfunction. Brazilian J. Med. Biol. Res. 2018;51(3). Doi: 10.1590/1414-431X20177174.

55. Kang H et al. Cancer cell glycocalyx and its significance in cancer progression. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(9). Doi: 10.3390/ijms19092484.

56. Szpera-Gozdziewicz A, Breborowicz GH. Endothelial dysfunction in the pathogenesis of pre-eclampsia. Front. Biosci. – Landmark. Frontiers in Bioscience. 2014;19(5):734–746. Doi: 10.2741/4240.

57. Miranda S et al. New insights into antiphospholipid-related endothelial dysfunction by assessment of vascular glycocalyx layer: results from a preliminary cross-sectional study. Lupus. 2020;29(2):157–164. Doi: 10.1177/0961203319897958.

58. Мороз В. В., Рыжков И. А. Острая кровопотеря: регионарный кровоток и микроциркуляция (Обзор, часть II) // Общая реаниматология. – 2016. – Т. 12, № 5. – С. 65–94. Doi: 10.15360/1813-9779-2016-5-65-94.

59. Lee DH et al. Deeper penetration of erythrocytes into the endothelial glycocalyx is associated with impaired microvascular perfusion. PLoS One. 2014;9(5). Doi: 10.1371/journal.pone.0096477.

60. Eriksson S, Nilsson J, Sturesson C. Non-invasive imaging of microcirculation: A technology review. Med. Devices Evid. Res. 2014;7:445–452. Doi: 10.2147/MDER.S51426.

61. Goedhart PT et al. Sidestream Dark Field (SDF) imaging: a novel stroboscopic LED ring-based imaging modality for clinical assessment of the microcirculation. Opt. Express. 2007;15(23):15101. Doi: 10.1364/oe.15.015101.

62. Alphonsus CS., Rodseth RN. The endothelial glycocalyx: A review of the vascular barrier. Anaesthesia. 2014;69(7): 777–784. Doi: 10.1111/anae.12661.

63. Vlahu CA et al. Damage of the endothelial glycocalyx in dialysis patients. J. Am. Soc. Nephrol. 2012;23(11):19001908. Doi: 10.1681/ASN.2011121181.

64. Xue XJ et al. Relationship between the endothelial glycocalyx and the extent of coronary atherosclerosis. Microcirculation. 2018;25(8). Doi: 10.1111/micc.12504.

65. Mulders TA et al. Non-invasive assessment of microvascular dysfunction in families with premature coronary artery disease. Int. J. Cardiol. 2013;168(5):5026–5028. Doi: 10.1016/j.ijcard.2013.07.166.

66. Haeren RHL et al. Protocol for intraoperative assessment of the human cerebrovascular glycocalyx. BMJ Open. 2017;7(1). Doi: 10.1136/bmjopen-2016-013954.

67. Pérez-Bárcena J et al. Direct observation of human microcirculation during decompressive craniectomy after stroke. Crit. Care Med. 2011;39(5):1126–1129. Doi: 10.1097/CCM.0b013e31820ead5e.

68. Amraoui F et al. Microvascular Glycocalyx Dimension Estimated by Automated SDF Imaging is not Related to Cardiovascular Disease. Microcirculation. 2014;21(6):499–505. Doi: 10.1111/micc.12125.

69. Грудянов А. И., Ткачева О. Н., Хатагов А. Т. и др. Влияние хирургического лечения пародонтита на состояние эндотелия микрососудов подъязычной области // Стоматология. – 2016. – Т. 95, № 4. – С. 9–12. Doi: 10.17116/stomat20169549-12.

70. Parkanyi L et al. Odontogenic foci and systemic diseases. A review. Orv. Hetil. 2018;159(11):415–422. Doi: 10.1556/650.2018.31008.

71. Горшков А. Ю., Гуманова Н. Г., Бойцов С. А. Темнопольная микроскопия в изучении эндотелиального гликокаликса: первый российский опыт; воспроизводимость метода // Регионар. кровообращение и микроциркуляция. 2016. – Т. 15, № 1. – С. 33–41. Doi: 10.24884/1682-6655-2016-15-1-33-41.

72. Winey M et al. Conventional transmission electron microscopy. Molecular Biology of the Cell. 2014;25(3):319–323. Doi: 10.1091/mbc.E12-12-0863.

73. Hegermann J et al. Visualization of the glomerular endothelial glycocalyx by electron microscopy using cationic colloidal thorium dioxide. Histochem. Cell Biol. 2016;145(1):41–51. Doi: 10.1007/s00418-015-1378-3.

74. Fabre-Gray ACM et al. Imaging the placental glycocalyx with transmission electron microscopy. Placenta. 2018; 74:59–61. Doi: 10.1016/j.placenta.2018.12.004.

75. Chappell D et al. Sevoflurane reduces leukocyte and platelet adhesion after ischemia-reperfusion by protecting the endothelial glycocalyx. Anesthesiology. 2011;115(3):483–491. Doi: 10.1097/ALN.0b013e3182289988.

76. Oltean S et al. Vascular endothelial growth factorA165b is protective and restores endothelial glycocalyx in diabetic nephropathy. J. Am. Soc. Nephrol. 2015;26(8):18891904. Doi: 10.1681/ASN.2014040350.

77. Boels MGS et al. Atrasentan Reduces Albuminuria by Restoring the Glomerular Endothelial Glycocalyx Barrier in Diabetic Nephropathy. Diabetes. 2016;65(8):2429–2439. Doi: 10.2337/db15-1413.

78. Koufakis DI et al. Conjunctival surface changes in patients with Sjögren’s syndrome: A transmission electron microscopy study. Investig. Ophthalmol. Vis. Sci. 2006;47(2):541–544. Doi: 10.1167/iovs.05-0804.

79. Dyduch A et al. Transmission electron microscopy of microvilli of intestinal epithelial cells in celiac disease in remission and transient gluten enteropathy in children after a gluten-free diet. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 1993;16(3):269–272. Doi: 10.1097/00005176-199304000-00008.

80. Arkill KP et al. 3D Reconstruction of the Glycocalyx Structure in Mammalian Capillaries using Electron Tomography. Microcirculation. 2012;19(4):343–351. Doi: 10.1111/j.1549-8719.2012.00168.x.

81. Wang Z. Imaging nanotherapeutics in inflamed vasculature by intravital microscopy. Theranostics. 2016;6(13):24312438. Doi: 10.7150/thno.16307.

82. Masedunskas A et al. Intravital microscopy: A practical guide on imaging intracellular structures in live animals. Bioarchitecture. 2012;2(5):143–157. Doi: 10.4161/bioa.21758.

83. Dane MJC et al. Glomerular endothelial surface layer acts as a barrier against albumin filtration. Am. J. Pathol. 2013;182(5):1532–1540. Doi: 10.1016/j.ajpath.2013.01.049.

84. Lukasz A et al. Endothelial glycocalyx breakdown is mediated by angiopoietin-2. Cardiovasc. Res. 2017;113(6):671–680. Doi: 10.1093/cvr/cvx023.

85. Mukherjee R et al. Nanoscale Surface Characterization of Human Erythrocytes by Atomic Force Microscopy: A Critical Review. IEEE Trans. Nanobioscience. 2015;14(6):625–633. Doi: 10.1109/TNB.2015.2424674.

86. Pleshakova TO et al. Atomic force microscopy for protein detection and their physicochemical characterization. International Journal of Molecular Sciences. 2018;19(4). Doi: 10.3390/ijms19041142.


Для цитирования:


Власов Т.Д., Лазовская О.А., Шиманьски Д.А., Нестерович И.И., Шапорова Н.Л. Эндотелиальный гликокаликс: методы исследования и перспективы их применения при оценке дисфункции эндотелия. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2020;19(1):5-16. https://doi.org/10.24884/1682-6655-2020-19-1-5-16

For citation:


Vlasov T.D., Lazovskaya O.A., Shimanski D.A., Nesterovich I.I., Shaporova N.L. The endothelial glycocalyx: research methods and prospects for their use in endothelial dysfunction assessment. Regional blood circulation and microcirculation. 2020;19(1):5-16. (In Russ.) https://doi.org/10.24884/1682-6655-2020-19-1-5-16

Просмотров: 101


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1682-6655 (Print)