Инфракрасная термография пальцев рук человека как метод оценки адаптации регионарного кровообращения к кровопотере

Цель исследования - изучение динамики температурной реакции верхних конечностей пациентов с кровопотерей в ответ на кратковременную ишемию. Материал и методы исследования. Искусственная ишемия руки создавалась с помощью 2-х минутного манжеточного окклюзионного теста. Мониторинг температуры пальцев рук исследуемых был осуществлен с помощью тепловизора ThermoTracer TH9100XX (NEC, USA) в условиях окружающей среды с температурой +24-25°С. Температурное окно тепловизора было установлено в диапазоне от 25 до 36°C. Исследована динамика температурной реакции 14 здоровых добровольцев, 5 здоровых доноров крови и 35 пациентов с постгеморрагическим шоком. Количественные данные представлены в виде среднего арифметического и стандартного отклонения. Результаты исследования. Установлено, что у здоровых добровольцев и доноров крови через 60 минут после забора у них по 400 мл крови температура в подушечках пальцев рук снижалась более чем на 0,1°С, а после прекращения cuff occlusion test развивалась локальная гипертермия подушечек пальцев рук, их температура повышалась и через 60-90 секунд становилась выше исходных значений на 0,5-1,5°С, после чего восстанавливалась до исходного уровня в течении 3-5 минут. У пациентов с кровопотерей по классификации ATLS более 35% после прекращения cuff occlusion test гипертермия в подушечках пальцев не развивалась, а их температура оставалась ниже исходных показателей более 3-5 минут. Выводы Изменения локальной температуры пальцев рук человека после использования манжеточного окклюзионного теста могут служить в качестве критерия адаптации регионального кровообращения к кровопотере.

инфракрасная термография, кровопотеря, шок, манжеточный окклюзионный тест, infrared thermography, blood loss, shock, cuff occlusion test

1. Ураков А.Л. Рецепт на температуру. Ижевск: Удмуртия. 1988. 80 с.

2. Уракова Н.А., Касаткин А.А. Острая гипоксия вызывает спонтанное охлаждение тела человека // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2014. № 10. С. 86-88.

3. Carlile C., Wade C.E., Baraniuk M.S., Holcomb J.B., Moore L.J. Evaluation of StO2 tissue perfusion monitoring as a tool to predict the need for lifesaving interventions in trauma patients // Am J Surg. 2015. 210(6). P. 1070-1075.

4. De Backer D., Ospina-Tascon G., Salgado D., Favory R., Creteur J., Vincent J.L. Monitoring the microcirculation in the critically ill patient: current methods andfuture approaches // Intensive Care Med. 2010. 36. P. 1813-1825.

5. Frick P., Mizeva I., Podtaev S. Skin temperature variations as a tracer of microvessel tone // Biomedical Signal Processing and Control. 2015. Т. 21. С. 1-7.

6. Holcomb J.B. et al. Transfusion of plasma, platelets, and red blood cells in a 1:1:1 vs a 1:1:2 ratio and mortality in patients with severe trauma: the PROPPR randomized clinical trial // JAMA. 2015. 313(5). P. 471-482.

7. Joly H.R., Weil M.H. Temperature of the great toe as an indication of the severity of shock // Circulation. 1969. 39(1). P. 131-138.

8. Jordan F. Shock after Surgical Operations and Injuries // Br Med J. 1867. 1(319). P. 136-137.

9. Kasatkin A.A., Urakov A.L., Rudnov V.A., Mal’chikov A.J., Dement’ev V.B., Kasatkina N.A., Shikhova N.J. Method of determining microcirculatory injuries in case of shock and efficiency of anti-shock treatment. Patent RU 2480183, 2013 Bull. 12.

10. Kauvar D.S., Wade. C.E: The epidemiology and modern management of traumatic hemorrhage: US and international perspectives // Crit Care. 2005. 9(Suppl 5). P. S1-S9.

11. Kortbeek J.B. et al. Advanced Trauma Life Support for Doctors, 8th edition, the evidence for change // J Trauma. 2008. Vol. 64. P. 1638-1650.

12. Kozek-Langenecker S.A. et al. Management of severe preoperative bleeding. Gudelines from the Europen Society of Anaesthesiology // EJA. 2013. 30. P. 270-382.

13. Negovski V.A., Gurvich A.M., Zolotokrylina E.S. Postresuscitation disease. 2-nd revised and apdated edition Moscow, "Meditsina". 1987. 480 p.

14. Rossaint R. et al. Management of bleeding following major trauma: an updated European guideline // Crit Care. 2010. 14. R52.

15. Shoemaker W. Oxygen transport and oxygen metabolism in shock and critical illness. Invasive and noninvasive monitoring of circulatory dysfunction and shock // Crit Care Clin. 1996. 12(4). P. 939-969.

16. Siesjo B.K. Cerebral circulation and metabolism // J Neurosurg. 1984. 60(5). P. 883-908.

17. Urakov A.L., Kasatkin A.A., Urakova N.A., Ammer K. Infrared thermographic investigation of fingers and palms during and after application of cuff occlusion test in patients with hemorrhagic shock // Thermology International. 2014. 24(1). P. 5-10.

18. Urakova N.A., Urakov A.L. Diagnosis of intrauterine newborn brain hypoxia using thermal imaging video // Biomedical Engineering, 2014. 48(3). P. 111-115.

19. Urakov A.L., Urakova N.A., Kasatkin A.A., Gausknekht M.J., Gajsina L.F., Churkin A.V. Method for assessing body compensatory response to acute hypoxia. Patent RU 2531924, 2014 Bull. 30.

20. Vlasov T.D., Smirnov D.A., Nutfullina G.M. Preconditioning of the small intestine to ischemia in rats // Neuroscience and Behavioral Physiology. 2002. Т. 32. № 4. P. 449-453.

21. Vlasov T.D., Korzhevskii D.E., Poliakova. Ischemic preconditioning of the rat brain as a method of endothelial protection from ischemic/repercussion injury // Neuroscience and Behavioral Physiology. 2005. Vol. 35. № 6. P. 567-572.

22. Williams J.R. The Declaration of Helsinki and public health // Bull World Health Organ. 2008. 86(8). P. 650-652.

23. Wilson S.B., Spence V.A. Dynamic thermographic imaging method for quantifying dermal perfusion: potential and limitations // Medical and Biological Engineering and Computing September. 1989. Vol. 27(5). P. 496-501.

24. Zeman W., Youngue E. Decortication as a result of widespread circulatory and anoxic damage // J Neuropathol Exp Neurol. 1957. 16(4). P. 492-506.