Аутотрансплантация полнослойного кожного лоскута как способ биостимуляции микроциркуляции в условиях нормальной и нарушенной иннервации

Цель работы - оценка биостимулирующего действия аутотрансплантации полнослойного кожного лоскута (АТПКЛ) на микроциркуляцию в условиях нормальной и нарушенной иннервации у белых крыс. Материалы и методы исследованя. Эксперименты выполнены на 5 группах белых крыс: две группы сравнения - животные, которым выполнялась нейрорафия седалищного нерва в остром и отсроченном периодах; и три опытные - животные, которым выполнялась АТПКЛ в межлопаточную область без повреждения седалищного нерва, а также одновременно с нейрорафией в остром и отсроченном периодах соответственно. Микроциркуляцию кожи изучали методом лазерной допплеровской флоуметрии (ЛДФ). Результаты исследования. У интактных животных после выполнения АТПКЛ в зоне трансплантации возникают воспалительные изменения перфузии кожи, которые сохраняются на протяжении 21-х суток. В коже тыльной поверхности стопы при этом происходит увеличение микрокровотока в течение первых двух недель. При повреждении седалищного нерва на 21-е сутки после выполнения нейрорафии как в остром, так и отсроченном периодах у животных происходит снижение перфузии кожи и угнетение нейрогенной модуляции кровотока кожи в зоне иннервации. АТПКЛ, выполненная одновременно с нейрорафией в остром и отсроченном периодах, нормализует перфузию кожи в зоне иннервации поврежденного нерва. Данный эффект более выражен в условиях острой нейрорафии. Характерной особенностью биостимулирующего действия при отсроченной нейрорафии является выраженная активация эндотелиальной модуляции микрокровотока. Выводы. АТПКЛ оказывает выраженное биостимулирующее воздействие на микроциркуляторное русло как в условиях нормальной, так и нарушенной иннервации. Биостимулирующее влияние АТПКЛ на микроциркуляцию в условиях нарушенной иннервации определяет перспективы ее использования в терапии повреждений периферической нервной системы.

аутотрансплантация, биостимуляция, микроциркуляция, нейрорафия, autografting, biostimulation, microcirculation, neurorhaphy

1. Анохова Л.И., Патеюк А.В., Кузник Б.И., Кохан С.Т. Сравнительное влияние полипептидов эндометрия и тималина на некоторые показатели иммунитета и гемостаза в опытах in vitro и in vivo // Бюллетень Восточно-Сиб. науч. центра Сибир. отд-я РАМН. 2011. № 6. С. 156-159.

2. Галимова В.У., Камилов Ф.Х., Газдалиева Л.М., Нураева А.Б. Влияние хирургического лечения посттравматической субатрофии глаза на уровень оксида азота в плазме крови и слёзной жидкости // Вестник Оренбург. гос. ун-та. 2007. № 78. С. 58-60.

3. Иванов А.Н., Федонников А.С., Норкин И.А., Пучиньян Д.М. Коррекция микроциркуляторных нарушений в стратегиях менеджмента остеоартрита и остеохондропатий //Росс. мед. журн. 2015. Т. 21. № 1. С. 18-23.

4. Киселева В.П., Крылов А.В., Старикова Э.А., Кузнецова С.А. Фактор роста сосудистого эндотелия и иммунная система // Успехи современ. биол. 2009. Т. 129. № 4. С. 1-12.

5. Крупаткин А.И. Новые возможности оценки иннервации микрососудов кожи с помощью спектрального анализа колебаний микрогемодинамики // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2004. Т. 3. № 4. С. 52-59.

6. Крупаткин А.И., Сидоров В.В. Лазерная допплеровская флоуметрия микроциркуляции крови: рук-во для врачей. М.: Медицина, 2005. 256 с.

7. Миронов С.П., Крупаткин А.И., Голубев В.Г., Панов Д.Е. Диагностика и выбор тактики лечения при повреждениях периферических нервов //Вестник травматол. и ортопедии им. Н. Н. Приорова. 2005. № 2. С. 33-39.

8. Монастырская Е.А., Лямина С.В., Малышев И.Ю. М1 и М2 фенотипы активированных макрофагов и их роль в иммунном ответе и патологии // Патогенез. 2008. Т. 6. № 4. С. 31-39.

9. Мулдашев Э.Р., Нигматуллин Р.Т., Галимова В.У. Концепция регенеративной медицины "Аллоплант" // Новейшие методы клеточных технологий в медицине. Новосибирск, 2014. С. 10.

10. Пасечникова Н.В., Мальцев Э.В., Сотникова Е.П., Мороз О.А. Препараты тканевой терапии. Ч. 2: Наиболее широко применяющиеся представители // Офтальмолог. журн. 2011. № 4 (441). С. 83-91.

11. Barouch R., Schwartz M. Autoreactive T-cells induce neurotrophin production by immune and neural cells in injured rat optic nerve: implications for protective autoimmunity // FASEB J. 2002. Vol. 16. № 10. Р. 1304-1306.

12. Bhatia M., Pereira M., Rana H. et al. The Mechanism of Cell Interaction and Response on Decellularized Human Amniotic Membrane: Implications in Wound Healing // Wounds. 2007. Vol. 19. № 8. Р. 207-217.

13. Eto H. Suga H., Inoue K. et al. Adipose injury-associated factors mitigate hypoxia in ischemic tissues through activation of adipose-derived stem/progenitor/stromal cells and induction of angiogenesis //Am. J. Pathol. 2011. Vol. 178. № 5. Р. 2322-2332.

14. Gao F., Liu Y., He Y. et al. Hyaluronan oligosaccharides promote excisional wound healing through enhanced angiogenesis // Matrix Biol. 2010. Vol. 29. № 2. Р. 107-116.

15. Humeau A., Koitka A., Abraham P. et al. Time-frequency analysis of laser Doppler flowmetry signals recorded in response to a progressive pressure applied locally on anaesthetized healthy rats // Phys. Med. Biol. 2004. Vol. 49. № 5. P. 843-857.