Skin flap autografting as a method of microcirculation biostimulation in the conditions of normal and impaired innervation

The purpose of the study. The estimation of biostimulating effect of skin flap autografting (SFA) on microcirculation in white rats in the condition of normal and impaired innervation. Materials and methods. The experiments were conducted on 5 groups of white rats: two comprison groups - the animals exposed to sciatic nerve neurorhaphy in the acute and delayed periods, and three experimental - animals with SFA in interscapular region without sciatic nerve damaging and together with acute and delayed neurorhaphy respectively. Skin microcirculation was analyzed by Lazer Doppler flowmetry (LDF). Results. After SFA intact animals show inflammatory changes in skin perfusion in the transplantation area that continue up to the 21st day of the experiment. At the same time there is micro bloodflow increase in the foot dorsum skin in the course of the first two weeks of the experiment. In the presence of sciatic nerve damaging there is decrease in skin perfusion and suppression of skin bloodflow neurogenic modulation in the innervation area detected on the 21st day post-neurorhaphy both in acute and delayed period. SFA conducted together with acute and delayed neurorhaphy normalizes skin perfusion in the innervation area of the damaged nerve. This effect is more frank for acute neurorhaphy. Expressed activation of bloodflow endothelial modulation is the attribute of biostimulating effect in delayed neurorhaphy. Conclusion. SFA has significant biostimulating effect on the microcirculatory bloodstream both in normal and impaired innervation. Biostimulating effect of skin flap on microcirculation in the presence of impaired innervation defines the opportunities of its application in the therapy of peripheral nerve damages.

аутотрансплантация, биостимуляция, микроциркуляция, нейрорафия, autografting, biostimulation, microcirculation, neurorhaphy

1. Анохова Л.И., Патеюк А.В., Кузник Б.И., Кохан С.Т. Сравнительное влияние полипептидов эндометрия и тималина на некоторые показатели иммунитета и гемостаза в опытах in vitro и in vivo // Бюллетень Восточно-Сиб. науч. центра Сибир. отд-я РАМН. 2011. № 6. С. 156-159.

2. Галимова В.У., Камилов Ф.Х., Газдалиева Л.М., Нураева А.Б. Влияние хирургического лечения посттравматической субатрофии глаза на уровень оксида азота в плазме крови и слёзной жидкости // Вестник Оренбург. гос. ун-та. 2007. № 78. С. 58-60.

3. Иванов А.Н., Федонников А.С., Норкин И.А., Пучиньян Д.М. Коррекция микроциркуляторных нарушений в стратегиях менеджмента остеоартрита и остеохондропатий //Росс. мед. журн. 2015. Т. 21. № 1. С. 18-23.

4. Киселева В.П., Крылов А.В., Старикова Э.А., Кузнецова С.А. Фактор роста сосудистого эндотелия и иммунная система // Успехи современ. биол. 2009. Т. 129. № 4. С. 1-12.

5. Крупаткин А.И. Новые возможности оценки иннервации микрососудов кожи с помощью спектрального анализа колебаний микрогемодинамики // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2004. Т. 3. № 4. С. 52-59.

6. Крупаткин А.И., Сидоров В.В. Лазерная допплеровская флоуметрия микроциркуляции крови: рук-во для врачей. М.: Медицина, 2005. 256 с.

7. Миронов С.П., Крупаткин А.И., Голубев В.Г., Панов Д.Е. Диагностика и выбор тактики лечения при повреждениях периферических нервов //Вестник травматол. и ортопедии им. Н. Н. Приорова. 2005. № 2. С. 33-39.

8. Монастырская Е.А., Лямина С.В., Малышев И.Ю. М1 и М2 фенотипы активированных макрофагов и их роль в иммунном ответе и патологии // Патогенез. 2008. Т. 6. № 4. С. 31-39.

9. Мулдашев Э.Р., Нигматуллин Р.Т., Галимова В.У. Концепция регенеративной медицины "Аллоплант" // Новейшие методы клеточных технологий в медицине. Новосибирск, 2014. С. 10.

10. Пасечникова Н.В., Мальцев Э.В., Сотникова Е.П., Мороз О.А. Препараты тканевой терапии. Ч. 2: Наиболее широко применяющиеся представители // Офтальмолог. журн. 2011. № 4 (441). С. 83-91.

11. Barouch R., Schwartz M. Autoreactive T-cells induce neurotrophin production by immune and neural cells in injured rat optic nerve: implications for protective autoimmunity // FASEB J. 2002. Vol. 16. № 10. Р. 1304-1306.

12. Bhatia M., Pereira M., Rana H. et al. The Mechanism of Cell Interaction and Response on Decellularized Human Amniotic Membrane: Implications in Wound Healing // Wounds. 2007. Vol. 19. № 8. Р. 207-217.

13. Eto H. Suga H., Inoue K. et al. Adipose injury-associated factors mitigate hypoxia in ischemic tissues through activation of adipose-derived stem/progenitor/stromal cells and induction of angiogenesis //Am. J. Pathol. 2011. Vol. 178. № 5. Р. 2322-2332.

14. Gao F., Liu Y., He Y. et al. Hyaluronan oligosaccharides promote excisional wound healing through enhanced angiogenesis // Matrix Biol. 2010. Vol. 29. № 2. Р. 107-116.

15. Humeau A., Koitka A., Abraham P. et al. Time-frequency analysis of laser Doppler flowmetry signals recorded in response to a progressive pressure applied locally on anaesthetized healthy rats // Phys. Med. Biol. 2004. Vol. 49. № 5. P. 843-857.